PHERAstar FSX
功能强大,高度灵敏的HTS酶标仪
吸光度检测是酶联免疫吸附实验(ELISA)、核酸定量及蛋白质分析等应用中的核心检测技术。本指南将系统介绍吸光度检测的基本原理及其在微孔板读板仪中的应用,帮助您获得准确、可靠的实验结果。
在生命科学与分析化学中,吸光度检测主要用于定量分析溶液中的目标分子。
许多生物分子在特定波长下具有固有的吸收特性。例如,核酸和蛋白质主要吸收紫外光,叶绿素吸收蓝光与红光区域,而血红蛋白在可见光范围内具有特征吸收峰。在背景吸光度较低的体系中,这些分子可无需额外处理即可实现直接定量分析。
然而,吸光度定量并不限于具有天然吸收特性的分子。通过特定的化学反应或酶促反应,可将目标分析物转化为具有吸光特性的产物(发色团),从而实现间接定量。在此类检测中,反应体系通常依赖特定底物或酶,样品中目标物质的含量越高,生成的有色产物越多,其对应的吸光度信号也越强。
下文将介绍吸光度检测的典型应用场景,涵盖细胞活力分析及蛋白质定量等多个领域。
能够穿过样品的光占入射光的比例称为透射率(Transmission),通常以百分比表示(图 2)。溶液中分析物含量越高,光被吸收得越多,透射率相应降低。
吸光度(Absorbance)用于表征样品对光的吸收程度,其定义为透射率以 10 为底的负对数¹。
以下为描述透射率与吸光度关系的数学公式及示例:
透射率:T =Iout /Iin
吸光度:A =-log10T
表 1:透射率与对应吸光度值示例表
| 透射率 | 吸光度 |
| 0.1 (或 10%) | 1 OD (光密度单位) |
| 0.01(或 1%) | 2 OD |
| 0.001(或 0.1%) | 3 OD |
吸光度检测的结果通常以透射率或光密度(OD)表示。其核心目的在于对溶液中目标物质进行定量分析。因此,关键在于将检测信号准确转换为浓度信息。
常用方法主要包括两类:一是基于比尔–朗伯定律(Beer–Lambert Law)进行直接计算,二是通过构建标准曲线对未知浓度样品进行定量分析。
比尔 - 朗伯定律描述了吸光度、光程长度与吸光物质浓度之间的关系:
A = c × d × ε
变形为浓度计算公式: c = A / (d × ε)
其中:
•A = 吸光度;
•c = 物质浓度(单位根据检测需求而定,如 mol/L、μg/mL);
•d = 光程长度(单位:cm);
•ε = 摩尔吸光系数(与物质及波长相关,单位:L/(mol・cm) 或 mL/(μg・cm))。
该定律表明,吸光度与 “浓度 × 光程长度 × 摩尔吸光系数” 呈线性关系 ²。光程长度指光在样品中传播的有效路径长度,例如标准比色皿的光程通常为 1 cm;摩尔吸光系数是特定物质在特定波长(通常为该物质的最大吸收波长)下的特征常数,反映物质对光的吸收能力。以牛血清白蛋白(BSA)为例,其质量吸光系数为 0.67 μL・cm⁻¹・μg⁻¹,因此在 1 cm 光程条件下,浓度为 1 μg/μL 的 BSA 溶液的吸光度为 0.67 OD。
比尔 - 朗伯定律的优势在于无需额外引入显色试剂即可实现对吸光物质的直接定量,但在实际应用中需满足以下前提条件:
若不满足上述条件,可通过间接检测或构建标准曲线的方法对分析物进行定量。例如,Bradford 法等比色法蛋白质定量实验,基于蛋白质存在时吸光度增强的特性,通过测定已知浓度标准样品建立标准曲线,并结合未知样品的吸光度信号,实现其浓度的定量计算。
透射率 / 吸光度的测量首先依赖于稳定的光源。不同类型的光源在光谱覆盖范围、光强以及发射稳定性等方面存在差异,从而影响检测性能与适用范围。
卤钨灯的光谱覆盖范围为 360 nm 至 1000 nm 以上,因其效益高而被广泛应用于常规检测。相比之下, 氙闪光灯的光谱覆盖范围为 220 nm 至 1000 nm,包含紫外光谱区。从而支持核酸(260 nm)和蛋白质(280 nm)的检测与定量。BMG LABTECH 吸光度酶标仪采用氙闪光灯作为光源,可在 220–1000 nm 范围内实现任意波长选择或全光谱快速测量,显著提升检测的灵活性与效率。
目标样品通常需转移至比色皿或微孔板中进行吸光度测量。所用容器材料必须具备优良的光学透过性能,以保证入射光在通过样品时的损失最小化,从而确保测得信号主要来源于溶液本身的吸光特性,而非容器材料的光学干扰。
常见微孔板及比色皿材料具有不同的光学特性与应用适配性。其中,聚苯乙烯是最常用的微孔板材料,可根据细胞培养或 ELISA 等应用需求进行表面修饰,以提供特定的生物分子结合性能。然而,该材料在紫外波段不具备光学透过性,因此当检测波长低于 400 nm 时,必须采用紫外透过材料(如环烯烃共聚物,COC)制成的专用微孔板。
在吸光度测量中,样品体积是影响检测可靠性与数据可比性的关键参数之一。标准比色皿通常需要约 4.5 mL 样品,半微量比色皿可将体积需求降低至约 1.5 mL,而微量比色皿仅需约 70 µL 即可完成测量。
比色皿检测采用水平光路设计,即入射光沿固定光程(通常为 1 cm)穿过样品,并在对侧进行透射光检测。因此,其光程由比色皿几何结构严格定义,具有高度一致性。这一特性与微孔板检测形成本质区别:微孔板采用垂直光路(top or bottom reading),其有效光程依赖于样品体积及液面形态。
因此,在微孔板体系中,光程并非固定参数,而是随样品体积变化而变化,这要求实验设计中必须保证各孔体积一致,以维持数据的可比性。此外,如相关应用指南《如何处理微孔板中的光程和弯月面问题》 所述,液体弯月面会进一步改变实际光程,使中心测量区域的有效光程低于理想平面液面条件。该效应在基于比尔–朗伯定律的定量分析或体积波动较大的实验中尤为关键。对于水溶液体系,可通过水峰光程校正(water-peak correction)对由弯月面引起的光程偏差进行补偿。
在标准 96 孔板中,样品体积通常为 100–300 µL,对应光程约为 2.9–7.4 mm。对于样品量受限的实验体系,可采用半面积孔板或高密度微孔板,在保持孔高度不变的情况下减少孔径面积,从而在降低样品消耗的同时维持足够的光程条件
相应地,微孔板测量的光程也会随样品体积变化,这就要求在一次实验中使用等量的样品。此外,如操作指南《如何处理微孔板中的光程和弯月面问题》中详细说明的那样,弯月面效应在微孔板吸光度测量中对光程影响显著。在微孔板孔的中部进行测量时,若存在明显弯月面,其光程会比无弯月面时短。这一点在应用比尔 - 朗伯定律(Beer-Lambert)或实验中弯月面变化较大的情况下尤为重要。在水溶液中,可利用水的吸光度来校正由弯月面引起的光程变化(水峰光程校正法)。
为校正缓冲体系成分、微孔板材料以及光散射等因素引入的非特异性吸光度信号,需在进行样品检测的同时设置空白对照(blank)。理想的空白样品应包含实验体系中的全部组分,仅不含目标分析物,因此在多数情况下,仅使用 PBS 或纯水作为空白对照往往不足以实现准确校正。
需特别关注样品及空白体系中的颗粒性干扰物:颗粒会引起光散射,从而降低到达检测器的透射光强,导致表观吸光度升高。此外,颗粒在溶液中的随机运动可能造成光路遮挡的时间依赖性变化,使其在检测路径中的出现呈现非稳定性,从而增加吸光度测量结果的变异性。
当体系中难以完全去除颗粒时,建议采用更大面积的孔区域进行信号采集,以降低局部不均一性对结果的影响。BMG LABTECH 全系列酶标仪均支持基于孔内多区域扫描的检测模式,可有效提升含颗粒样品吸光度测量的稳定性与重复性。
透射光穿过样品后,需要通过检测器进行检测。酶标仪中常用的吸光度检测器主要包括两类:光电倍增管(Photomultiplier Tube, PMT)与 CCD 光谱检测器(基于 CCD 的分光系统)。
基于光电倍增管(PMT)的检测系统通常需要在测量前预先选择目标波长。该过程可通过光学滤光片或单色器(光栅系统)实现,即首先对入射光进行波长筛选,再将特定波长的光引导至样品或检测路径。样品透射光随后到达光电倍增管,PMT 将光信号进行多级放大,并输出与光强度成比例的电信号(电压信号)。当需要在一定波长范围内进行扫描测量时,基于 PMT 的系统通常采用光栅逐波长扫描方式,对光谱范围内的各个离散波长逐点进行选择与检测,从而构建完整的吸光度谱图。
这一机制也是其与第二类检测系统——光谱仪的关键区别所在。基于 CCD 的光谱检测系统会将透射光通过光栅或分光元件分解为不同波长成分,并将整个光谱范围内的光同时投射至 CCD 检测器,实现多波长同步采集。由于无需逐点扫描,其获取单波长或多波长数据所需时间几乎相同。
BMG LABTECH 吸光度检测系统采用紫外/可见光光谱检测技术,可在不到 1 秒的时间内完成 220–1000 nm 全光谱吸光度数据的采集,实现高通量与高分辨率的同步测量。
在紫外波段检测(例如核酸或 NADH 定量)时,必须使用紫外透过微孔板。若使用不具备紫外透过性能的板材,将导致样品信号被材料完全吸收,使所有孔的吸光度值异常升高甚至达到饱和,从而造成检测结果失真或实验失败。
比色皿的光程长度为标准化的 1 cm,而微孔板中的有效光程则随样品体积及孔板结构而变化。因此,在相同溶液条件下,微孔板测得的吸光度通常低于比色皿测量结果。
对于水溶液体系,可通过水峰光程校正(water-based pathlength correction)将微孔板中的光程归一化至 1 cm,从而实现与比色皿数据的可比性。在已知光程的情况下,还可进一步结合比尔–朗伯定律进行浓度定量分析。
在微孔板实验中,我们建议所有样品保持一致的加样体积,以确保光程条件的一致性。然而,即使体积相同,由于液面弯月面效应(meniscus effect)的存在,实际光程仍可能产生差异。
对于水溶液体系,可通过水峰光程校正进行修正,或通过标定光程长度后再应用比尔–朗伯定律进行定量计算,以提高结果的准确性与可重复性。
任何位于光学路径中的非均一因素均可能影响吸光度测量结果。常见干扰包括气泡、微孔板盖冷凝水、孔底灰尘、划痕或指纹等。这些因素会引起额外光散射或遮挡,从而导致吸光度升高或数据波动增加。
因此,在测量前应对微孔板进行严格检查,以确保光学路径的清洁与一致性,从而获得可靠的检测数据。
吸光度检测在生命科学研究中的一个核心应用是溶液中蛋白质浓度的定量分析。目前已有多种比色法(colorimetric assays)用于总蛋白含量测定,例如 Bradford 法、BCA 法等。这类方法通常作为蛋白质样品进入下游实验(如 Western blot、免疫沉淀、酶活分析等)前的重要标准化步骤,用于确保样品输入量的一致性与可比性。
关于 Bradford 法、BCA 法等具体原理及方法选择,可参考相关技术资料《蛋白质检测:选择合适的方法》。
核酸及其组分在 260 nm 波长处具有天然紫外吸收特性,因此无需任何染色或预处理步骤,即可通过测定 A260 吸光度对 DNA/RNA 浓度 进行快速定量分析。
此外,通过同时测定多个波长(例如 230 nm、280 nm 及 340 nm),还可对核酸样品的纯度进行评估,以检测蛋白质污染、有机溶剂残留或背景吸收干扰等情况,从而提高定量结果的可靠性。
吸光度检测同样广泛应用于特异性蛋白质的定量分析,其中酶联免疫吸附实验(ELISA) 是最具代表性的技术之一。
在典型 ELISA 体系中,捕获抗体固定于微孔板表面并特异性结合目标抗原;随后加入的检测抗体进一步结合抗原形成复合物。该检测抗体通常通过酶标记体系进行信号放大,并可被酶标二抗识别或直接偶联。在底物转化反应过程中,酶催化无色底物生成具有特征吸收峰的有色产物(chromophore)。因此,样品中目标蛋白浓度越高,孔内酶标记量越多,最终产生的吸光度信号亦相应增强,从而实现对目标蛋白的定量分析³。
基于吸光度的比色法细胞活力检测由于其操作简便、成本低及高通量适配性,在细胞生物学与药物筛选中被广泛采用。 利用微孔板可同时检测多种条件下的细胞活力。
该类方法通常依赖于细胞代谢活性对特定底物的还原能力。例如 MTT、XTT 或 resazurin 等底物可被活细胞内的还原体系转化为具有吸光特性的产物,其吸光度强度与细胞代谢活性呈正相关,因此常被用于间接反映细胞活力或增殖状态⁴。关于不同细胞活力检测方法的原理与适用性,可参考相关专题资料细胞活力。
在微生物学研究中,酶标仪及分光光度计常通过测定 600 nm 处的光密度(OD₆₀₀ )来监测细菌或酵母的生长曲线。
该测量信号本质上主要来源于光散射(light scattering),而非真实的分子吸收。微生物悬浮液中的颗粒(如细菌细胞或酵母细胞)会对入射光产生散射效应;随着细胞密度增加,散射增强,使到达检测器的透射光减少,从而表现为 OD 值升高。因此,OD₆₀₀ 的变化在实验上常作为细胞浓度的间接指标,其物理基础主要由散射而非特定吸光分子所主导⁵。
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